Main Article Content

Abstract

RÉSUMÉ
Introduction. Vernonia conferta est une espèce utilisée par les populations camerounaises dans la prise en charge des plaies. L’objectif de ce travail était de déterminer la composition chimique et d’évaluer les propriétés antimicrobiennes de cette plante. Méthodologie. L’étude était de type expérimental. Le matériel végétal était constitué d’écorces de tronc de V. conferta. L’extraction a été réalisée par macération dans le MeOH. Il s’en est suivi le criblage phytochimique qualitatif, l’isolement et la caractérisation des molécules et l’évaluation des propriétés antimicrobiennes de l’extrait. Résultats. Le rendement d’extraction a été de 2,66%, les composés phénoliques et terpénoïdes ont été révélés. Un mélange de β‐sitostérol et de stigmastérol, ainsi que l’acide bétulinique, ont été isolés. L’extrait méthanolique a montré une forte activité antibactérienne sur les souches de S. aureus et E. coli avec une CMI de 1.25 µg / ml et une très forte activité antifongique sur la souche de C. albicans avec une CMI de 0,78 µg / ml, de plus l’activité a été bactéricide et fongistatique. Conclusion. Ces résultats démontrent que l’extrait d’écorces de V. conferta peut être utilisé pour la formulation d’une solution antiseptique.


ABSTRACT
Introduction. Vernonia conferta is a species used by the Cameroonian populations for the management of wounds. The aim of this work was to determine the chemical composition and evaluate the antimicrobial properties of this plant. Methodology. The study was experimental. The plant material consisted of trunk bark of V. conferta. The extraction was carried out by maceration in MeOH, followed by qualitative phytochemical screening, the isolation and characterization of the molecules and the evaluation of the antimicrobial properties of the extract. Results. The extraction yield was 2.66%, the phenolic and terpenoid compounds were revealed. A mixture of β‐sitosterol and stigmaterol and also betulinic acid, were isolated. The methanolic extract showed high antibacterial activity against the S. aureus and E. coli strains with a MIC of 1.25 µg/ml and very high antifungal activity against the C. albicans strain with a MIC of 0.78 µg / ml, in addition the activity was bactericidal and fungistatic. Conclusion. These results demonstrate that V. conferta bark extract can be used for the formulation of an antiseptic solution.

Keywords

Vernonia conferta Antimicrobial activity β‐sitosterol Stigmasterol Betulinic acid Vernonia conferta v β‐sitostérol Stigmastérol Acide bétulinique

Article Details

How to Cite
Soppo Lobe Charlotte Vanessa, Nko’o Moïse Henri Julien, Foumane Maniepi Ngoupiho Jacqueline Saurelle, Benga Mekoulou Félicité, Nyangono Ndongo Martin, Emanda Ekoudi Martin, Toukam Michel, Nnanga Nga, & Ze Minkande Jacqueline. (2023). Chemical Composition and Antimicrobial Activity of Methanol Extract of Barks of Vernonia conferta (Asteraceae)on Strains Responsible for Skin Infections. HEALTH SCIENCES AND DISEASE, 24(11). https://doi.org/10.5281/hsd.v24i11.4935

References

  1. Ngeh JT, Verpoorte R. A review of the medicinal potentials of plants of the genus Vernonia (Asteraceae). J Ethnopharmacol. 2013;146(3):681‑723.
  2. Bayaga HN, Guedje NM, Biye EH. Approche ethnobotanique et ethnopharmacologique des plantes utilisées dans le traitement traditionnel de l’ulcère de Buruli à Akonolinga (Cameroun. Int J Biol Chem Sci. 2017;11(4):1523‑41.
  3. Houndjrebo FS, Houngnihin RA, Barogui YT, Sopoh GE, Diez G, PHYTOTHÉRAPIE JRC, et al. In: SOINS DES ULCÈRES CHRONIQUES DANS LES COMMUNES DE ZÈ ET OUINHI AU SUD DU BÉNIN. 2019.
  4. Fonge B. A., Egbe EA, Fongod AGN, Focho DA, Tchetcha DJ, Nkembi L, et al. Ethnobotany survey and uses of plants in the Lewoh-Lebang communities in the Lebialem highlands, SouthWest Region, Cameroon. J Med Plants Res [Internet]. 9 févr 2012 [cité 12 oct 2018];6(5). Disponible sur: http://www.academicjournals.org/jmpr/abstracts/abstracts/abstracts2012/9Feb/Fonge%20et%20al.htm
  5. Vernonia conferta Benth [Internet]. 2018. Disponible sur: https://www.prota4u.org/database/protav8.asp?g=psk&p=Vernonia+conferta+Benth.
  6. Soppo Lobe CV. photos prises lors de la présente étude.
  7. Harbonne JB. A Guide to Modern Techniques of Plant Analysis. 5e éd. London: Chapman and Hall Ltd; 1998. p. 72.
  8. WHO. Manual for the laboratory identification and antimicrobial susceptibility testing of bacterial pathogens of public health importance in the developing world: Haemophilus influenzae, Neisseria meningitidis, Streptococcus pneumoniae, Neisseria gonorrhoea, Salmonella serotype Typhi, Shigella, and Vibrio cholerae. 2003.
  9. Bashige VC, Bakari AS, Okusa PN, Kalonda EM, Lumbu JBS. Criblage phytochimique et activité antimicrobienne de six rhizomes comestibles utilisés en médecine traditionnelle à Lubumbashi (RDC. Int J Biol Chem Sci. 2020;14(4):1367‑80.
  10. Kuete V. Potential of Cameroonian Plants and Derived Products against Microbial Infections: A Review. Planta Med Oct. 2010;76(14):1479‑91.
  11. Carbonnelle B, Denis F, Marmonier A, Pinon G, Vague R. Bactériologie Médicale: Techniques Usuelles. SIMEP Paris. 1987;228‑82.
  12. Gasting D, Mbah J, Garba I, Tane P, Djemgou P, Nji-Nkah B. An Antisalmonellal agent from the leaves of Glossocalyx brevipes Benth (Monimiaceae. Pak J Biol Sci. 2006;9(1):84‑7.
  13. Kamboj A, Saluja A. Isolation of Stigmasterol and β‐Sitosterol from petroleum ether extract of aerial parts of Ageratum conzoides (Asteraceae). Int J Pharm Pharm Sci. 3(1). 2011;94‑6.
  14. Mahato S, Kundu A. 13C NMR Spectra of pentacyclic triterpenoids - a compilation and some salient features. Phytochemistry. 1517;37(6).
  15. Tangmouo J, Lontsi, Ngounou, Kuete V, Meli Lannang A, Manfouo. Diospyrone, a new coumarinyl binaphthoquinone from Diospyros canaliculata (Ebenaceae): Structure and antimicrobial activity. Bulletion of Chemical Society of Ethiopa. 19e éd. 2005;81‑8.
  16. Mvondo Ozela IC, Mbopi PY, Bayaga HN, Fotsing PRK, Tchouani JJ, Ngoupayo J. Evaluation of the antibacterial activity on strains responsible for diarrhoea; antioxidant and cytotoxic activities in vitro of the leaves and trunk bark of Vernonia conferta Benth (Asteraceae). GSC Biol Pharm Sci. 2021;17(1):041‑51.
  17. Orabueze C, Adesegun S, Ota D, Coker H. In vivo antiplasmodial activities of four Nigerian plants used singly and in polyherbal combination against Plasmodium berghei infection. Indian J Tradit Knowl Oct. 2018;17(4):716‑23.
  18. Jepkorir Kiplimo J. A Review on the Biological Activity and the Triterpenoids from the Genus Vernonia (Asteraceae Family). Int Res J Pure Appl Chem. 2016;11(3):1‑14.
  19. Erasto P, Grierson DS, Afolayan AJ. Bioactive sesquiterpene lactones from the leaves of Vernonia amygdalina. J Ethnopharmacol Juin. 2006;106(1):117‑20.
  20. Umoh IJ, Eseyin OA, Ahmadu AA. Phytosterol from the leaves of Vernonia conferta Benth (Asteraceae. Niger J Pharm Appl Sci Res. 2016;5(3):16‑7.
  21. Diallo D, Sanogo R, Yasambou H, Traoré A, Coulibaly K, Maïga A. Étude des constituants des feuilles de Ziziphus mauritiana Lam. (Rhamnaceae), utilisées traditionnellement dans le traitement du diabète au Mali. Comptes Rendus Chim. 2004;7(10):1073‑80.
  22. Aline Cristina Guimaraes, Leandra Martins Meireles, Mayara Fumiere Lemos. Antibacterial Activity of Terpenes and Terpenoids Present in Essential Oils. Molecules. 5 juill 2019;24(13):2471.
  23. Kossivi Issa SALOUFOU, Pakoupati Bruno BOYODE, Oudjaniyobi SIMALOU, Kodjo ELOH. Identification de deux phytostérols biologiquement actifs de l’extrait cyclohexanique des feuilles de Ficus sur (Moraceae). Int J Biol Chem Sci. oct 2017;11(5):2510‑20.

Most read articles by the same author(s)

1 2 > >>